Características y composición del semen. El semen o esperma es una solución blanquecina, a veces un poco grisácea, opaca y viscosa compuesta por espermatozoides suspendidos en el plasma seminal. Consta de cuatro fracciones, que llegan a la uretra en rápida sucesión y son emitidas en siguiente orden: · Fracción preeyaculatoria: supone del 10 – 15% del volumen total. Es una secreción transparente procedente de las glándulas vulvouretrales.. Su función es hacer más resbaladizo el canal uretral para que pueden vaciarse más fácilmente las otras fracciones. · Fracción previa: Supone un 20% y corresponde a la secreción prostática. Contiene ácido cítrico y enzimas proteolíticas y sale acompañada de la tercera fracción. · Fracción principal: supone de 5 – 10 % y es la secreción testículo epidídimo diferencial. Contiene a los espermatozoides. · Fracción final: es un 50 – 60% del volumen. Es una secreción coloide precedente de las vesícula seminales. Son la fuente de fructosa en el semen que constituye el principal nutriente de los espermatozoides. Toma de muestra. El período de abstinencia previo a la recogida de muestras se recomienda que sea de 3 – 5 días. El recipiente en el que se recoja debe ser de boca ancha y estéril y, preferentemente graduado.Se suelen utilizar frascos de polipropileno neutro diseñados para la recogida de orina.Previamente a la recogida se debe realizar un lavado minucioso del meato urinario y del glande. El método de elección para la recogida es la masturbación, puesto que permite que la muestra sea completa y sin contaminación. No deben aceptarse las muestras recogidas en preservativos ya que contienen sustancias espermicidas que alterarían el resultado. Es deseable que se recoja en una zona próxima al laboratorio, con el recipiente precalentado a la temperatura corporal ya que el análisis debe realizarse en un plazo de 2 horas máxima después de eyacular. Si se recoge la muestra fuera del laboratorio esta debe llegar al mismo en un plazo máximo de una hora. Estudio macroscópico: Aspecto: el semen recién emitido es denso, viscoso, opaco y blanquecino. El color amarillento indica piospermia por infecciones y el color rojizo hemospermia por procesos varicoso o traumáticas. Volumen: el volumen normal es de 2 a 5 ml, siendo el volumen medio 3.5 ml. Un volumen superior a 10 ml se denomina polisemia y es patológico, ya que los espermatozoides van muy diluido y llegan en poca concentración al moco cervical.
Un volumen inferior a un ml se denomina oligocemia y también es completamente patológico. La medida del volumen se realiza colocando la muestra en un tubo de centrífuga graduado. Tiempo de licuación: coagula tras su emisión y en circunstancia normales deben licuarse totalmente a los 15 minutos tanto “en vitro” como “ en vivo”. Un semen que se emite ya licuado indica posible inflamación prostática o de la vesículas seminales. Un tiempo de licuación superior a 4 horas supone un obstáculo para la fecundación. Color: el color es normal es blanquecino opalescente. pH: el liquido seminal tiene un pH alcalino oscilando entre 7,2 y 8. Lo más habitual es de 7,5 a 7,6. Si hay inflamación de la glándula, el pH es superior a 8. Si hay una obstrucción en el conducto eyaculador el pH puede ser ácido. El pH se determina fácilmente con una tira reactiva y debe hacerse relativamente pronto por que se va alcalinizando con el tiempo. Viscosidad: es una determinación que se realiza una vez se haya licuado la muestra. Se puede realizar por dos métodos. Estudio microscópico: Consiste en el estudio de las características de los espermatozoides comprende los siguientes exámenes. a) b) c) d)
Recuento. Movilidad. Índice de vitalidad: Estudio morfológico (formula espermatica).
Estos son los estudios de rutina de una muestra de semen. Sin embargo para el control de vasectomía se determinan únicamente 2 parámetros el recuento y la movilidad.. a) Recuento: el cálculo del número de espermatozoides puede realizarse de forma automática o manualmente. El método automático: es similar al de células sanguíneas. Después de la licuefacción los espermatozoides pueden contarse en un hemocitómetro tras la dilución inicial de la muestra. Como líquido de dilución puede utilizarse la solución diluyente de Macomber y Saunders.
El recuento manual : se realiza en cámara.
1. Lo primero que debe hacerse es la homogenización de la muestra, agitando con una varilla de vidrio hasta obtener una gota pendiente en el extremo. 2. Dilución de la muestra con una pipeta de Thomas de glóbulos blancos hasta la señal 0,5 y el líquido diluyente hasta la señal 11. Con ello se obtienen una dilución 1/20. 3. Se homogeniza la muestra agitando intensamente la pipeta sujeta por ambos extremos haciendo girar la bolita de su interior. 4. Llenamos la cámara de recuento de Neubauer. Se desecha las 3 ó 4 primeras gotas, y se llena la cámara dejando reposar 2 minutos en una cámara húmeda para que sedimente los espermatozoides. 5. Se coloca la cámara en la platina del microscopio y con el objetivo 10x se comprueba que la distribución que es homogénea y que no hay aglutinación de espermatozoides.
Cálculo: estos se cuentan en 2 mm2, es decir, en dos cuadrados grandes de las esquinas. Nº espematozoide/ml = nº de espermatozoides contados x 1/0,2 Valores normales: en condiciones normales el nº de espermatozoides/ml de semen oscila entre 50 y 100 millones algunos se consideran normales hasta 120 millones. El semen en función del nº del espermatozoides se clasifica de la siguiente forma: Hiperespermia: cuando la cifra va de 120 millones a 400 millones/ml. Normospermia: de 50 a 120 millones/ml. Hipospermia: de 30 a 50 millones/ml. Oligospermia: de a 1 a 30 millones/ml. Azoospermia: es la ausencia de espermatozoides maduros y presencia de células de espermiogénesis. Aspermia: ausencia de espermatozoides y ausencia de células precursoras. b) Estudio da la movilidad: el estudio de la movilidad de los espermatozoides es un parámetro muy importante en el espermiograma. Es necesario que los espermatozoides tengan una movilidad activa para que atraviesen el moco cervical y lleguen hasta el óvulo. Esta movilidad va a depender de factores intrínsecos para los espermatozoides. La movilidad puede medirse mediante observación directa o con analizadores de imagen, es mucho más común la técnica de observación directa, para esto, se monta una gota de semen líquido o licuado entre porta y cubre con el portaobjeto precalentado a 37º y se observa microscópicamente. Es conveniente juntar los bordes del cubre con vaselina para evitar la desecación. La movilidad se valora observando varios campos con el objetivo de 40x, contando por lo menos 200 espermatozoide por campo. La movilidad se registra en % de espermatozoides móviles y en % de inmóviles.
Dentro de los epermatozoides móviles podemos distinguir 4 grados: -
Grado 0: cuando no se mueven en absoluto, inmóviles o movilidad nula. Grado 1: tienen un movimiento lento pero sin desplazamiento. Grado 2: tienen movimientos de vaivén o progresivos lentos y movimientos circulares. Grado 3: movimiento progresivo, rápido y rectilíneo.
La interpretación clínica de estos datos sería la siguente: Un semen se consideraría normal cuando hay al menos de un 60 a 90% de formas móviles. Se denomina Astenospermia cuando hay menos del 50% de formas móviles y Necrospermia cuando todas las formas carecen de movilidad.
c)
Indice de vitalidad o test de Willans Pollck
Consiste en un estudio del la necrospermia. Los espermatozoides muertos sufren una alteración en su membrana, que hace que esta deje pasar a su interior la eosina mientras que las formas vivas no se colorean. Es un estudio complementario de la motilidad ya que se distingue dentro del grupo de las formas inmóviles de las que están vivas de las que están muertas, permite verificar la exactitud de la evaluación de la motilidad de forma que el % de espematozòides teñidos nunca puede ser superior al de formas inmóviles. Se puede llevar a cabo por dos técnicas: -
Montaje húmedo para lectura rápida en fresco.
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Frotis para observar con el objetivo de inmersión.
d)
Estudio morfológico o formula espermatica:
Es muy importante el conocimiento de las características morfológicas de los espermatozoides para valorar el potencial fecundativo de una muestra junto con el numero total de espermatozoides y su movilidad. La morfología del espermatozoide se valora mediante recuentos diferenciales de los tipos de espermatozoides morfológicamente normales y anormales en extenciones teñidas. También se observan las células de espermatogenesis que puedan aparecer. Las alteraciones en la forma de los espermatozoides pueden deberse a causas genéticas a gentes citostático, químicos o físicos como las radiaciones, alcoholismo, tabaquismo, determinadas enfermedades infecciosas. -
Normales
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Anomalías de cabeza: Cabezas duplicadas Cabezas gigantes Cabezas pequeñas
Cabezas redondas Cabezas alargadas Cabezas amorfas Anomalías del cuello: Cuello engrosado Cuello alargado Cuello inmaduro Cuello ausente Anomalías de la cola: Cola bífida Cola mal implantada Cola enrollada Ausente Examen bioquímico: El examen bioquímico del semen se basa en la dosificación de ciertos compuestos secretados por las vesículas seminales, la próstata y los epidídimo. Como algo más especializado se puede realizar también el analices de los componentes del espermatozoides LSH, ATP.... Procedente de la próstata se determinan los siguientes parámetros; ácido cítrico, fosfatasa ácida y zinc. Procedente de las vesículas seminales tenemos la fructosa. Marcadores prostáticos; tanto el ácido cítrico como la fosfatasa ácida tiene una relación directa con el funcionamiento de la próstata teniendo el mismo valor diagnostico. Sin embargo el laboratorio de siempre preferencia de determinación del ácido cítrico ya que es una prueba más sencilla. El zinc es un parámetro representativo de actividad bacteriana. Marcadores de la vesícula seminales: Fructosa ; la glucosa que llega por la sangre hasta la vesículas seminales es convertida de fructosa y concentrada hasta cifras bastante altas por influencia de la testosterona. Se utiliza para el estudio de la función de las vesículas seminales para la testosterona. La técnica de determinación, emplea un método colorimétrico o métodos enzimáticos. Los valores normales oscilan entre 180 y 500 mg/dl.